Будайчиев Гасан Магомед-Алиевич Клинико-патогенетический подход в программе профилактики и лечения кариеса у детей с сахарным диабетом первого типа

Краткое содержание

Материал и методы исследования. Для решения задач проведены клинические, лабораторные, цитоморфологические исследования 187 детей в возрасте 6-12 лет с подтверждённым диагнозом «СД 1 типа», которые находились на лечении в эндокринологических отделениях ГБУ РД «ДРКБ им. Н. М. Кураева» г. Махачкалы и ГБУЗ МЗ СК «ДГКБ им. Г.К. Филиппского» г. Ставрополя. Дети с диагнозом «СД 1 типа», имеющие стаж заболевания от трёх месяцев до десяти лет, разделены на три подгруппы: 1-я подгруппа - длительность заболевания до 1 года (n=58; 31,0%); 2-я подгруппа - от 1 года до 5 лет (n=56; 29,9%); 3-я подгруппа - от 5 до 10 лет (n=73; 39,1%). В соответствии с задачами исследования, дети с различным стажем СД 1 типа разделены на две группы - группу контроля и основную профилактическую группу. Дети группы контроля, родители которых отказались от применения средств патогенетической терапии в профилактике и лечении кариеса, получали базовый комплекс кариес профилактических мероприятий. Для детей основной профилактической группы, родители которых подписали добровольное информированное согласие, разработана комплексная программа профилактики и лечения кариеса с использованием средств патогенетической терапии.
Клинические методы исследования детей включали: осмотр полости рта; сбор анамнеза; определение индекса распространённости, интенсивности кариозного процесса - КПУ+кп (ВОЗ, 1962); гигиенического индекса (Ю.А. Федоров, В.В. Володкина, 1970); OHI-S (Green- Vermillion, 1964); ТЭР-теста (Окушко В.Р., 1984); очаговой деминерализации эмали (Аксамит JI.A.,1978) с использованием «Кариес-индикатора» («Omega Dent»); электроодонтодиагностики с применением аппарата «Дент Эст» («Geosoft Dent») по методике В.К. Леонтьева (1985).
Объектом лабораторных исследований являлась НРЖ, забор которой проводился натощак с 8 до 9 часов утра в соответствии с рекомендациями ЦНИИС (1991) при помощи системы «Saliva RNA Collection and Preservation Devices». После получения НРЖ центрифугировали (t=10 мин) при 3000 об/мин и разливали по стеклянным пробиркам. Пробирки закрывали пробкой и замораживали в холодильной камере при -20°С. Полученный материал транспортирован в Отделение лабораторной диагностики АНМО «СКККДЦ». Перед проведением исследования пробы оттаивали при +3°С ^=10часов), после чего t проб доводили до комнатной.
Состояние в НРЖ кальций-фосфорного обмена и кальций-регулирующих гормонов исследовали по уровню общего (Са общий), ионизированного кальция (Са2+), неорганического фосфора (Р), активности ЩФ, содержанию ПТГ, остеокальцина, 25-ОН витамина D3 на анализаторе COBAS 6000 «Hoffmann - LaRoche Diagnostics» с использованием коммерческих тест-наборов «Monobind», «Bio Systems», «Biomerica», «F. Hoffman-La Roche». Концентрацию лактоферрина определяли двухсайтовым твердофазным ИФА-анализом при помощи «Набора реагентов для количественного иммуноферментного определения лактоферрина Лактоферрин- стрип D4106» согласно инструкции производителя («Вектор-БЕСТ»). Результаты регистрировали при Х=492 нм на фотометре «Multiskan FC» микропланшетного типа фирмы «Thermo Scientific» с помощью программного обеспечения для персонального компьютера «SkanItSoftware». Активность лизоцима устанавливали методом фотонефелометрии (Дорофейчук В.Г., 1968). С помощью апробированных методов определяли скорость саливации (FDJ, 2001), уровень рН - при помощи микропроцессорного анализатора рН метр-ионометр «SevenCompact S220-Basic».
Цитоморфологические исследования НРЖ проводили методом микроскопии высохшей капли с помощью люминесцентного микроскопа «Axio Scope. A1» с цифровой видеокамерой для микроскопии «AxioCam HSc» в отражённом свете с бестеневым освещением при общем увеличении (х 12,5 - *1000). Минерализующий потенциал НРЖ оценивали по методике П.А. Леус (1977) при увеличении (х40 - *400). Для изучения коэффициента контаминации микробной флоры исследованы центрифугаты НРЖ, которые были зафиксированы смесью Никифорова и окрашены методом Романовского-Гимза. В мазках цитоморфометрически определено число клеток, подвергнутых микробной контаминации. Интенсивность воспалительных реакций в полости рта оценивали с помощью саливарного индекса воспаления. В высушенных мазках проведён цитоморфометрический подсчёт числа ПЯЛ лейкоцитов в десяти полях зрения.
Количественное определение степени обсеменённости стимулированной ротовой жидкости кариесогенной микрофлорой (Lactobacillus, Str. mutans) проводилось с помощью метода «погружных стёкол». При выполнении данного метода были применены готовые диагностические тесты для посева «Dentocult SM Strip mutans» и «Dentocult LB» («Orion Diagnostica»).
Статистическая обработка осуществлялась методами вариационной статистики с помощью пакета прикладных компьютерных программ «SPSS Statistics 22.0» и «Statistica 8.0».