Эндометриоидные кисты яичников: клинические особенности и патогенетические аспекты формирования Арешян Кнарик Арутюновна

Короткий опис

Арешян Кнарик Арутюновна. Эндометриоидные кисты яичников: клинические особенности и патогенетические аспекты формирования: диссертация ... кандидата Медицинских наук: 14.01.01 / Арешян Кнарик Арутюновна;[Место защиты: ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации], 2019
Эндометриоидные кисты яичников: клинические особенности и патогенетические аспекты формирования Арешян Кнарик Арутюновна
ОГЛАВЛЕНИЕ ДИССЕРТАЦИИ
кандидат наук Арешян Кнарик Арутюновна
ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I. ЭНДОМЕТРИОИДНЫЕ КИСТЫ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)

1.1 Понятие об эндометриозе

1.2 Эндометриоз с точки зрения роли стволовых клеток

1.3 Современные представления об эндометриоидных

кистах яичников

1.4 Оперативное лечение эндометриоидных кист яичников

ГЛАВА 2. КЛИНИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ПАЦИЕНТОК

ИССЛЕДУЕМЫХ ГРУПП

ГЛАВА 3. МОРФОМЕТРИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ КЛЕТОК ЭУТОПИЧЕСКОГО И ЭУТОПИЧЕСКОГО ПРИ ЭНДОМЕТРИОИДНЫХ КИСТАХ ЯИЧНИКОВ, А ТАКЖЕ ЭУТОПИЧЕСКОГО ЭНДОМЕТРИЯ БЕЗ

ЭНДОМЕТРИОЗА

3.1. Результаты морфометрического исследования

ГЛАВА 4. ЭКСПРЕССИЯ металлопротеиназ, СБ15 и 45, РБОБКр В ЭКТОПИЧЕСКОМ И ЭУТОПИЧЕСКОМ ЭПИТЕЛИИ У ЖЕНЩИН С ЭНДОМЕТРИОИДНЫМИ КИСТАМИ ЯИЧНИКОВ И БЕЗ ЭНДОМЕТРИОЗА

ГЛАВА 5. ОБСУЖДЕНИЕ ПОЛУЧЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ

ГЛАВА 6. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Список сокращений и условных обозначений

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ВВЕДЕНИЕ

Список літератури

Эндометриоз с точки зрения роли стволовых клеток
С 2007 года в ряде работ выдвинуто предположение о роли стволовых клеток в патогенезе эндометриоза [113, 133]. Но начало пониманию роли стволовых клеток в регенерации эндометрия было положено еще в 1978 году В.А. Прянишниковым, постулировавшим, что в циклической регенерации эндометрия играют роль стволовые клетки [160]. 20 лет спустя клеточные популяции со свойствами стволовых клеток обнаружены на базальной мембране эндометрия [125, 82, 81, 128, 178, 123]. Это открыло новые горизонты в изучении патогенеза эндометриоза [179]. В эндометрии были идентифицированы две популяции стволовых клеток: мезенхимальные стволовые клетки и эпителиальные клетки-предшественники [113]. Позже стволовые клетки выявлены в очагах эндометриоза [87, 83], что привело к убеждению о распространении стволовых клеток эндометрия через маточные трубы в период менструации с последующим формированием эндометриоидных имплантов [164]. Известно, что у порядка 90% женщин происходит ретроградная менструация. Более того, мезенхимальные стволовые клетки эндометрия идентифицированы в большинстве образцов менструальной крови. Но страдает эндометриозом только 6-10% всех женщин. Было высказано первое предположение, что у женщин с эндометриозом в брюшную полость попадает большее количество стволовых клеток [113] за счет большего объема ретроградного кровотечения, или этот процесс более частый, что, однако, это сложно доказать [159]. Второе возможное объяснение основано на том, что фрагменты базального эндометрия в менструальной крови определяются чаще при эндометриозе по сравнению с женщинами без него, способствуя распространению большего количества стволовых клеток в брюшную полость при ретроградном забросе менструальной крови [126]. Возможно, при эндометриозе стволовые клетки мутируют, или происходит альтерация нишевых клеток, их окружающих [159].
Иное предположение связано с тем, что стволовые клетки эндометрия приживаются в перитонеуме с поврежденным иммунным клиренсом, что способствует выживаемости фрагментов эндометрия [187]. Еще больше вопросов существует в отношении изменения экспрессии факторов апоптоза или стероидогенных энзимов, есть различия этих факторов в нишевых клетках, сопровождающих стволовые клетки, и возможно, принимающих участие в их «выживании» и в брюшной полости [159].
Доказательством роли стволовых клеток может служить факт повышенной инвазии в культуре стромальных эндометриальных клетках, полученных от пациенток с эндометриозом [87], подтвержденное, в том числе, верификацией увеличенной экспрессии интегрина [99].
Самообновляющиеся эпителиальные и стромальные колониеобразующие единицы (КОЕ, CFU) обнаружены в эндометриоидных кистах яичников. Это также поддерживает значимость стволовых клеток в патогенезе эндометриоза [80]. Однако вопрос о пусковом механизме, способном активировать стволовые клетки в эутопическом и эктопическом эндометриях, остается открытым [138]. Возможно, роль играют генетические и иммунологические факторы, потенцирующие выживание клеток в эктопических очагах [177, 152, 114].
Итак, циклическая регенерация эндометрия зависит от небольшого пула тканеспецифических мультипотентных стволовых клеток [151]. Иным потенциальным ресурсом для клеток эндометрия служит костный мозг. С точки зрения H.S. Taylor, ежемесячная мобилизация стволовых клеток костного мозга для регенерации эндометрия может быть нормальным физиологическим процессом [181]. Позже H.S. Taylor выдвинул предположение, что стволовые клетки костного мозга не только участвует в циклическом восстановлении нормального эндометрия, но и мигрируют, дифференцируясь в эктопические эндометриальные клетки, внося достаточно скромный вклад в этот процесс [93, 142].
Эктопические мезенхимальные клетки стимулируют ангиогенез, обладают большей способностью к инвазии миграции по сравнению с эутопическими клетками in vitro и in vivo [99]. Также и мезенхимальные клетки, выделенные из эндометриоидных кист яичников, в культуре клеток обладают повышенной пролиферацией, миграцией и инвазией. Эктопические мезенхимальные клетки экспрессируют большее количество сосудисто-эндотелиального фактора роста (СЭФР) и фактора, индуцированного гипоксией (HIF-1, hypoxia-inducible factor) по сравнению с эутопическими клетками и мехенхимальными клетками нормального эндометрия [174]. HIF-1 способствует усилению экспрессии СЭФР [109]
Для стволовых клеток характерна экспрессия транскрипционного фактора, связывающего октамер (Oct4-А, оctamer-binding transcription factor-4), в мезенхимальных клетках эндометрия [150]. Эктопические и эутопические стволовые клетки экспрессируют Оct-4 mRNA и имеют дефицит щелевых межклеточных коммуникаций [87]. Существует противоположное мнение, что стволовые клетки эндометрия не обладают экспрессией Oct4-А [174] в противоположность подобным клеткам костного мозга [124]. Но и в отношении стволовых клеток костного мозга есть данные об отсутствии экспрессии Oct-4 [173, 154]. Вероятным объяснением радикально противоположных мнений является наличие изоформ Oct4.
Характерной особенностью стволовых клеток эутопического и эктопического эндометрия и нормального эндометрии (без эндометриоза) является экспрессия CD105, CD44, CD73 и виментина. Кроме того, они способны к остеогенной и эпителиальной дифференцировке подобно клеткам костного мозга [88]. Помимо этого, они экспрессируют SSEA-1 (stage-specific embryonic antigen, стадиеспецифический эмбриональный антиген) [88] и транскрипционные факторыc-Myc (ген-регулятор) и Klf-4 (Kruppel like factor, семейство Kruppel факторов транскрипции), но не Oct4-А [79].
При эндометриозе инвазия и пролиферация повышены также и в эндометриальных клетках [87, 99].
Характерное возрастание СЭФР возможно связано либо с усилением ангиогенеза в эндометриоидных очагах [139, 138], или с изменением фенотипа стволовых клеток под воздействием внешней среды [174,118].
В функциональном и базальном слоях эндометрия обнаружены стволовые мезенхимальные клетки (эМСК), экспрессирующие одновременно CD146 иPDGFR- (platelet-derived growth factor receptor beta, рецептор тромбоцитарного фактора роста), определяются в обоих этих слоях [170]. Эндометриальные регенерирующие клетки (endometrial regenerative cells, ERC) фенотипически идентичны мезенхимальным клеткам эндометрия и костного мозга, экспрессируют CD9, CD44, CD29, CD73, CD90 и CD105, но не имеют гемопоэтических маркеров CD34, CD45 и CD133 [100]. Аналогично мезенхимальным стволовым клеткам в эутопическом и эктопическом эндометриях [108] ERC экспрессирует Oct-4, c-KIT и специфический эмбриональный антиген SSEA-1, но не STRO-1 [100, 154]. ERC обладают способностью к повышенной выработке проангиогенных факторов и металлопротеаз при сопоставлении с другими мезенхимальными стволовыми клетками. Подтвержденный в научных исследованиях потенциал менструальных ERC генерировать ткани различной локализации [140, 141, 148] подтверждает их роль в патогенезе эндометриоза брюшной полости [159].
Итак, классическая теория эндометриоза Sampson базируется на попадании клеток эндометрия вовремя ретроградной менструации [169]. С позиции теории стволовых клеток можно объяснить, почему 90% женщин имеют ретроградную менструацию [167], а эндометриоз развивается при этом только у 6-10% женщин. В подтверждении гипотезы о большем количестве поступающих в брюшную полость эндометриальных клеток [113] было исследование, установившее, что W5C5+мезенхимальные клетки представлены в большей концентрации в перитонеальной жидкости женщин с эндометриозом в период менструации по сравнению со здоровыми женщинами [101].
Еще одним вариантом объяснения может быть наличие большего объема забрасываемой менструальной крови или более частая ретроградная менструация. Хотя подобное предположение с ложно доказуемо [159], на бабуинах продемонстрировано, что увеличение количества ретроградной менструации ведет к повышению частоты эндометриоза [91]. Еще одним доказательством данного утверждения является факт наличия фрагментов базального эндометрия в менструальной крови женщин с эндометриозом [71].
Оперативное лечение эндометриоидных кист яичников
Очень важным вопросом является техника оперативного вмешательства по поводу эндометриоидных кист яичников. Опыт последнего десятилетия привел к убеждению, что для минимизации травмы паренхимы яичников во время удаления кисты нужна щадящая лапароскопическая техника [53,130].
Для понимания основ этой техники необходимо знать особенности строения и локализации эндометриоидных кист яичников, состоящих из 3 зон (Рисунок 1) [130].
1-я зона (Рисунок 1) обычно интимно подпаяна к заднему листку широкой связки в области подъяичниковой ямки. 2-я зона с «активной» эндометриоидной тканью и с незначительным количеством фиброидной ткани. 3-я зона — область интенсивного фиброза, именно в этом месте хирург встречается с трудностями при отделении капсулы кисты от здоровой яичниковой ткани. В 2011 году W. Kondo с соавторами обосновали бережную технику хирургического удаления ЭКЯ лапароскопическим доступом. По мнению авторов, ЭКЯ в 95% случаев сопровождаются спаечным процессом. При выделении подпаянного яичника киста вскрывается. Бережный овариолизис проводится под непрерывным визуальным контролем по задней поверхности яичника близко к воронко-тазовой связке во избежание повреждения ворот яичника. Далее показано промывание брюшной полости с аспирацией. При осмотре внутренней поверхности кисты необходимо исключить визуальные признаки малигнизации. Далее определяется область вскрытия кисты, которая расширяется или рассекается с помощью ножниц. Нет необходимости вскрывать капсулы кисту в другом месте.
Далее зажим располагают между стенкой кисты и здоровой тканью яичника максимально близко к бессосудистой зоне ЭКЯ во избежание повреждения паренхимы яичника (Рисунок 2). Этим достигается минимизации кровопотери.
Основные трудности возникают при цистэктомии на этапе рассечения красных волокон капсулы. Простая тракция не может применяться в этом случае, поскольку фиброзная ткань достаточно плотная. Техника «stripping» («раздевания»), приводящая к кровотечению, на этом этапе не используется. Проводится коагуляция красноватых фибриновых волокон на наружной поверхности капсулы яичника, именно максимально близко к поверхности кисты во избежание распространения тепла на здоровую ткань яичника. Красные волокна можно идентифицировать как «стрелки», формирующие треугольник с вершиной у наружной поверхности кисты и основанием на неповрежденной ткани яичника. «Стрелки» пересекаются на верхушке треугольника, при этом необходимо избегать повреждения основания треугольника (Рисунок 3).
Обычно гемостаз на внутренней поверхности ЭКЯ происходит спонтанно. В противном случае выполняется с использованием биполярной коагуляции. Однако необходимо помнить, что последняя может повредить овариальный резерв. Поэтому при отсутствии кровотечения она не требуется [130]. Существует мнение [76, 90], что ушивание яичника с целью остановки кровотечения предпочтительнее по сравнению с коагуляцией. Однако сам по себе шов является фактором формирования послеоперационных спаек [130, 53, 38]. W. Kondo убежден в преимуществе удаления капсулы кисты через центральный троакар с использованием endobag [130].
Для определения степени распространения наружного генитального эндометриоза (НГЭ) в 1979 г. Американским обществом фертильности (R-AFS) предложена классификация, пересмотренная в 1985-86 годах. При всей ее доступности для широкого применения она не проливает свет на возможный прогноз наступления беременности после оперативного вмешательства. И это основной ее недостаток. В 2010 году David Adamson предложена новая шкала определения индекса фертильности при эндометриозе, предложенная [68, 34] (Таблица 3 и 4; Рисунок 4).
Ни одна подобная шкала несовершенна. Немаловажную роль играет квалификация хирурга. Кроме того, шкала, в принципе, основана на субъективизме хирурга. Однако несомненна польза шкалы в определении последующей после операции тактики ведения пациентки для преодоления бесплодия.
Как правило, любое хирургическое вмешательство способствует процессу спайкообразования в послеоперационном периоде, последствием чего является нарушение расположения органов, снижение фертильности и болевой синдром. Плотные, затрагивающие кишечник и придатки спайки de novo образуются в 58% у пациенток с эндометриозом после операции с их рассечением [132]. Из 4-х возможных методов удаления ЭКЯ, как клиновидная резекция, stripping метод, дренирование и аблация с помощью СО2 лазера, максимально «содействует» спайкообразованию с вовлечением яичник и маточной трубы клиновидная резекция [34]. Сравнение действия разных противоспаечных барьеров выявило, что окисленная регенерированная целлюлоза (Interceed), вспененный политетрафторэтилен (Goreex) и карбоксиметилцеллюлоза (Seprafilm) способны снизить вероятность развития спаечного процесса [73]. Однако большая часть доказательств эффективности данных препаратов является некачественной [131]. Недавняя публикация говорит о послеоперационных осложнениях у пациенток после использования противоспаечных барьеров. T. Tulandi (университет Макгилла, Канада) в 2015 году сделал доступным в печати анализ случаев применения противоспаечных барьеров. Итогом работы явилось свидетельство очевидности повышения числа случаев лихорадки и обструкции тонкого кишечника при использовании барьеров [180].
Универсальным средством, влияющим на соединительную ткань, является фермент гиалуронидаза. Она способствует деполимеризации гликозаминогликанов, формирующих матрикс фиброзной ткани. Но нативный фермент быстро инактивируется тканевыми ингибиторами, при этом имеет противоспалительные свойства, что ограничивает возможности его клинического использования. Эти недостатки фермента преодолены в современном препарате Лонгидаза [34].
Частота рецидивирования ЭК после хирургического лечения достаточна высока: в 15% случаев через год после операции, в 25% через 4 года, в 36% через 5 лет и в 50% случаев через 7 лет [63]. В последующие за оперативным вмешательством 2-5 лет при отказе от гормональной терапии рецидив происходит в 12-50% [164].
На сегодняшний день предупреждением рецидива ЭКЯ может быть назначение гормональной терапии [189, 86, 119].
Эксперты EHRE подчеркивают, что выбор терапии должен быть индивидуальным, лечение должно быть обсуждено с пациенткой с объяснением всех за и против назначаемой терапии [110].