Особенности биологической активности липополисахарида из фотосинтезирующей бактерии Rhodobacter capsulatus B10 Прохоренко, Изабелла Рувимовна

Короткий опис

Прохоренко,ИзабеллаРувимовна.ОсобенностибиологическойактивностилипополисахаридаизфотосинтезирующейбактерииRhodobactercapsulatusB10: диссертация ... докторабиологическихнаук : 03.00.07, 14.00.16. - Москва, 1999. - 173 с. : ил.больше
Цитаты из текста:

стр. 1
им. И.М. Сеченова Р О С С И Й С К А Я А К А Д Е М И Я Н А У К Институт фундаментальных проблем биологии РАН На правах рукописиПрохоренкоИзабеллаРувимовнаОСОБЕННОСТИБИОЛОГИЧЕСКОЙАКТИВНОСТИЛИПОПОЛИСАХАРИДАИЗ ФОТОСИНТЕЗИРУЮЩЕИ Б А К Т Е Р И ИRHODOBACTERCAPSULATUSBIO 03.00.07.— Микробиология 14.00.16.—

стр. 58
Л П С (см. главу 1.6) 58 II. Материалы и методы. //, 7. Получение ЛПС изфотосинтезирующихбактерий. 11.1.1. Культивирование клеток и получение биомассы. В работе были использованы несерные пурпурныебактерииRhodobactercapsulatus37Ь4,RhodobactercapsulatusBIO,Rhodobactersphaeroides 2R,Rhodobacter

стр. 141
относящихся активный к а-субклассуфотосинтезирующихвыявлен Proteobacteria, штамм-продуцент нетоксичноголипополисахарида- пурпурнаябактерияRhodobactercapsulatusBIO. 2. Подобраны условия ростабактерийRb.capsulatusBIO, позволяющие получать из нихлипополисахаридс минимальной антигеннойактивностью.

Оглавление диссертациидоктор биологических наук Прохоренко, Изабелла Рувимовна
Список сокращений.
Введение.
Актуальность проблемы.
Научная новизна.
Цель и задачи исследования.
Научно-практическая значимость.
Положения, выносимые на защиту.
Апробация работы.
Структура и объём диссертации.
Глава I. Литературный обзор.
1.1. Генетическая связь между фотосинтезирующими и другими грамотрицательными бактериями.
1.2. Строение клеточной стенки грамотрицательных бактерий.
1.3. Строение липолисахаридов.
1.3.1. Состав и строение О-антигена.
1.3.2. Структура кора.
1.3.3. Структура и биосинтез липида А.
1.4. Влияние методов выделения на выход и состав ЛПС из грамотрицательных бактерий.
1.5. Биологичеакая активность ЛПС.
1.5.1. Связь между структурой и биологической активностью ЛПС.
1.5.2. Взаимодействие ЛПС и липида А с фагоцитами.
1.5.3. ЛПС-связывающий белок плазмы (ЬВР).
1.5.4. Рецепторные свойства СО 14 в отношении комплексов ЬВР ЛПС.
1.6. Пути трансдукции сигнала, запускаемого ЛПС.
1.6.1. СИ14-связанные пути трансдукции сигнала.
1.6.2. СйМ-независимые пути трансдукции сигнала.
1.7. Медиаторы септического шока.
1.8. Основные подходы к нейтрализации ЛПС и цитокинов при сепсисе.
1.8.1. Подавление влияния ЛПС на клетки.
1.8.2. Подавление влияния на клетки цитокинов, образующихся в ответ на ЛПС.
1.8.3. Природные ингибиторы действия цитокинов.
1.8.4. Антагонисты эндотоксина.
Глава II. Материалы и методы.
ПЛ. Получение ЛПС из фотосинтезирующих бактерий.
1.1.1. Культивирование клеток и получение биомассы.
II. 1.2. Получение беспигментной биомассы (ацетонового порошка).
II. 1.3. Выделение ЛПС из ацетонового порошка.
II. 1.4. Определение чистоты ЛПС.
П.2. Определение качественного и количественного состава ЛПС.
11.2.1. Определение качественного состава коммерческих эндотоксинов и ЛПС методом электрофореза по ЬаеттИ.
11.2.2. Определение содержания липида А и полисахарида в ЛПС методом гидролиза.
II. 2.3. Определение содержания КДО по модифицированной методике ОяЬогп.
II. 2.4. Определение состава Сахаров методом ГЖХ и методом связывания со специфическими лектинами.
11.2.5. Определение состава жирных кислот методом ГЖХ.
II.2.6. Определение содержания фосфора.
II.3. Выявление антигенных свойств с помощью иммунных методов.
113.1. Получение политональных специфических антител.
II. 3.2. Оценка специфичности антител методом радиальной иммунодиффузии в агарозном геле.
П.4. Методы изучения биологической активности ЛПС и коммерческих эндотоксинов.
П.4.1. Выделение нейтрофилов из периферической крови человек.
II. 4.2. Выделение микросомной фракции из печени мышей.
11.4.3. Измерение концентрации свободных ионов Са+ в цитоплазме.
11.4.4. Определение содержания цитохрома Р450 в микросомау печени мыши.
III.3. Влияние метода выделения ЛПС на их состав и структуру III. 3.1. Влияние способа экстракции пигментов на выход беспигментной массы.
III. 3.2. Влияние метода выделения на выход ЛПС.
III. 3.3. Сравнение степени гетерогенности препаратов ЛПС, изолированных различными методами.
III. 3.4. Анализ чистоты изолированных ЛПС.
III.4. Электрофоретическая характеристика ЛПС как "фингерпринт" бактерий на уровне штамма.
111.5. Сравнительной анализ состава и чистоты ЛПС из Rhodobacter capsulatus BIO и Salmonella typhimurium.
111.6. Оценка антигенной активности ЛПС из Rb. capsulatus.
111.7. Изучение биологической активности ЛПС из Rb. capsulatus и эндотоксинов.
III. 7.1. Защита нейтрофилов человека от действия эндотоксинов липополисахаридом из Rb.capsulatus.
III. 7.2. Действие эндотоксина на систему цитохрома Р лабораторных мышей линии С57В1/6.
III. 7.3. Защитное действие ЛПС из фотосинтезирующих бактерий от летальных эффектов эндотоксинов в острых опытах на мышах.