Тестирование солеустойчивости нормальных и модифицированных форм сельскохозяйственных растений по цитологическим маркерам Баранова, Екатерина Николаевна

Краткое описание

Баранова,ЕкатеринаНиколаевна.Тестированиесолеустойчивостинормальныхимодифицированныхформсельскохозяйственныхрастенийпоцитологическиммаркерам: диссертация ... кандидата биологических наук : 03.00.23. - Москва, 2006. - 158 с. : ил.больше
Цитаты из текста:

стр. 1
61:06-3/981 РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯСЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХНАУК ВСЕРОССИЙСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТСЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННОЙБИОТЕХНОЛОГИИ иа правах рукописиБарановаЕкатеринаНиколаевнаТЕСТИРОВАНИЕСОЛЕУСТОЙЧИВОСТИНОРМАЛЬНЫХИМОДИФИЦИРОВАННЫХФОРМСЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХРАСТЕНИЙИОЦИТОЛОГИЧЕСКИММАРКЕРАМСпециальность 03.00.23 - биотехнология Диссертация на соискание ученой стененн кандидата...

стр. 6
процессе акклимациирастенийк стрессовым факторам могут служить надежнымицитологическимимаркерамиих устойчивости или чувствительности к засолению. Цель работы: Идентифицироватьцитологическиемаркеры, позволяющие тестировать исходные имодифицированныеформырастенийна устойчивость к солевому и осмотическому

стр. 35
из одного метаболического состояния в другое [Лапина и др., 1967; Балпокин Ю. В., 1990]. 1.3. Способы повышениясолеустойчивостирастений1.3.1.Традиционные методы Уровеньсолеустойчивостирастенийзакреплен генетически и проявляется лишь при действии этого экстремального фактора. Наиболее распространенным способом повьипепия продуктивностирастенийявляется увеличение норм орошения. Отмеченное при этом возрастание продуктивностирастенийявляется,

Оглавление диссертациикандидат биологических наук Баранова, Екатерина Николаевна
ВВЕДЕНИЕ
ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1.Солевой стресс и засоление, воздействие на растения
1.1.1. Засоление как фактор среды
1.1.2. Механизм действия солей на растения и адаптация
1.2.Воздействие солевого стресса и засоления на растения
1.2.1. Влияние солей на рост и морфологию растеиий
1.2.2. Влияние солей па мезоструктуру тканей и органов растеиий
1.2.3. Влияние солей на ультраструктуру клеток растений
1.2.4. Влияние стрессовых факторов па структуру и функции цитоскелета
1.2.5. Влияние стрессовых факторов на клеточный цикл меристемы растений
1.2.6. Влияние солей на физиологические параметры
1.2.7. Влияние солей на биохимические процессы
1.2.8. Влияние солей на транспорт и накопление ионов
1.2.9. Роль осмотически активных веществ в формировании солеустойчивости
1.2.10. Роль белков в формировании солеустойчивости
1.3.Способы повышения солеустойчивости растений
1.3.1. Традиционные методы^
1.3.2. Современные биотехнологические методы и генетическая инженерия
1.4.Методы оценки соле- и стрессоустойчивости растений
1.4.1. Традиционные методы
1.4.2. Другие методы оценки устойчивости
1.5.Мобилизация запасных веществ, влияние стрессовых факторов
1.5.1. Мобилизация запасных веществ при прорастаиии
1.5.2. Запасные белки
1.5.3. Запасные полисахариды
1.5.4. Запасные липиды
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
2.1. Схема постановки эксперимента
2.2. Фиксация и подготовка препаратов для ультраструктурного анализа
2.3. Приготовление пленок - подложек
2.4. Микротомия препаратов для ультраструктуриого анализа
2.5. Выявление тубулиповых компонентов цитоскелета (микротрубочек) клеток корня.
2.6. Определение пигментов
2.7. Определение пролина
2.8. Статистическая обработка
РЕЗУЛЬТАТЫ
3.1. Биометрические показатели контрольных растений и растений, развивающихся в условиях осмотического стресса ф 3.1.1. Всхожесть семян'
3.1.2. Динамика роста корня
3.1.3. Динамика изменения сырой биомассы
3.1.4. Содержание пролина
3.1.5. Содержание пигментов в надземных органах проростков
3.1.5.1. Содержание хлорофилла;
3.1.5.2. Содержание каратиноидов
3.1.6. Жизнеспособность проростков после развития в условиях осмотического стресса
3.2. Сравнительный анализ структурной организации основных внутриклеточных компартментов контрольных растении и растении, развивающихся в условиях осмотического стресса
3.2.1. Цитоскелет
Ф 3.2.1.1. Интерфазный цитоскелет
3.2.1.2. Цитоскелет при подготовке клеток к делеиию (С2-фаза, профаза)
3.2.1.3. Прометафаза:
3.2.1.4. Метафаза
3.2.1.5. Телофаза
3.2.2. Ультраструктура интерфазных ядер
3.2.3. Динамика утилизации крахмальных зерен в пластидах клеток корневой ® меристемы и семядолей
3.2.3.1. Клетки мезофилла семядолей
Щ 3.2.3.2. Клетки меристемы корней
3.2.4 . Динамика утилизации белковых тел и организация вакуолей в клетках корней и семядолей
3.2.4.1. Клетки мезофилла семядолей
3.2.4.2. Клетки корня
3.2.5. Динамика утилизации олеосом в клетках корней и семядолей
3.2.5.1. Клетки мезофилла семядолей ф 3.2.5.2. Клетки меристемы корня
3.3. Сравнительный анализ анатомического строения семядольных листьев люцерны сорта Надежда и устойчивого к засолению №С1 Клона
3.3.1. Сорт Надежда
3.3.2. Клон
ОБСУЖДЕНИЕ
4.1. Эффекты КаС1, КагБС^ и маннитола на биометрические и физиологические параметры проростков при прорастании в различных изоосмотических концентрациях.
4.2. Эффекты №С1, КагБС^ и маннитола на структуру тубулинового цитоскелета (микротрубочек) на разных фазах клеточного цикла в клетках меристематической зоны корня при прорастании семян люцерны в различных изоосмотических концентрациях
4.3. Эффекты ИаС1, КагБО^ и маннитола на ультраструктурную организацию ядрышка ® клеток меристематической зоны корпя при прорастании семян люцерны в различных изоосмотических концентрациях
4.4. Эффекты КаС1, КагБС^ и маннитола на утилизацию крахмала в клетках-ф мезофилла семядолей и меристематической зоны корня проростков люцерны при прорастании в различных изоосмотических концентрациях
4.5. Эффекты №С1, КагБС^ и маннитола на утилизацию запасных липидов в клетках мезофилла семядолей и меристематической зоны корня проростков люцерны при прорастании в различных изоосмотических концентрациях
4.6. Эффекты КаС1, КагБС^ и маннитола на утилизацию запасных белков в клетках мезофилла семядолей и меристематической зоны корня проростков люцерны при прорастании в различных изоосмотических концентрациях
4.7. Сравнение анатомической структуры семядольных листьев Клона 124 и сорта Щ Надежда при прорастании в различных изоосмотических концентрациях ЫаС1 и маннитола :